動(dòng)物模型構建平臺

1)小鼠失血性貧血模型

    常用的小鼠造模法主要有眼眶后靜脈叢放血法和剪尾尖或切開(kāi)尾動(dòng)脈法。

    ①眼眶后靜脈叢放血法：用左手固定小鼠并輕輕對頸部施加壓力，使頭部靜脈淤血，在突出的眼球旁分辨出后眼眶靜脈，然后用少量10％可卡因滴入動(dòng)物眼內，使眼部局部麻醉；右手持消毒過(guò)的毛細吸管從內側眼角由鼻側眼眶平行地向喉頭方向輕壓至后眼眶靜脈叢，血液自然吸入管內，放血6～8滴(約0.5ml)。毛細吸管內徑0.5～1.0mm，可用聚氯乙烯管或玻璃毛細管制成，采血時(shí)毛細管與鼠面成45°角，在淚腺區域內，由眼內角在眼瞼和眼球之間向喉頭方向刺入。若為針頭，其斜面先向眼球，刺入后再轉l80°角使斜面對著(zhù)眼眶后界刺入深度為2～3mm，當達到蝶骨感到有阻力時(shí)，再稍后退0.1～0.5mm，邊退邊抽。把取血管保持水平位，稍加旋轉并后退吸引。由于血壓關(guān)系，血液即自動(dòng)流入吸血管中，得到所需血管后，即除去加于頸部的壓力，同時(shí)拔出采血管，以防止術(shù)后穿刺孔出血.并用消毒紗布或棉球壓迫眼球止血30s。一般20g左右體重小鼠每鼠從眼眶靜脈叢抽血0.5ml。如隔日放血1次，連續5次可形成慢性失血性貧血模型。失血后24h形成急性失血性貧血模型。

    ②剪尾尖或切開(kāi)尾動(dòng)脈法：小鼠剪尾放血：用手揉擦或用溫水(45～50℃)加溫鼠尾，使之充分充血后，用剪刀剪去尾尖約2mm，用手輕輕從尾根部向尾尖部擠壓，使失血量達0.5ml左右。

2)大鼠失血性貧血模型

    一般大鼠造模有心臟放血法和靜脈多次放血法。

    ①大鼠心臟放血：從心臟抽血，抽血量約為總血量的1/4。大鼠心臟采血方法：將動(dòng)物仰臥固定板上，剪去胸前區部位的被毛，用碘酊、乙醇消毒皮膚。在左側第3、第4肋間，用左手食指摸到心搏處，右手持帶有4～5號針頭的注射器，選擇心搏最強處刺人。當針頭刺人心臟時(shí)，血液由于心臟跳動(dòng)的力量自動(dòng)進(jìn)入注射器。心臟采血約為總血量的1/4(總血量按體重6％計算)。

    ②大鼠尾靜脈多次放血法：體重為180～200g大鼠，經(jīng)其尾部放血1.5～2ml/只，隔日一次，連續5次，即可制作成慢性失血性貧血模型。

3)兔或犬失血性貧血模型

    將動(dòng)物常規麻醉后仰臥固定在手術(shù)臺上，用無(wú)菌操作分離其股動(dòng)脈或頸動(dòng)脈，插管，按動(dòng)物體重計數一次或多次放血量。家兔一次性放血占全血量30％，犬按40ml/kg體重量放血，可反復幾次，即可造成失血性貧血模型。

    (2)模型特點(diǎn)  以上幾種造模方法失血方法簡(jiǎn)單，指標明確，不需特殊設備，但失血量難以完全一致?？捎糜谝话闳辫F性貧血的新藥藥效學(xué)篩選，缺鐵性(失血性)貧血模型較為合理。造模成功的指標為RBC、Hb下降，同放血前有顯著(zhù)性差異。值得注意的是用小鼠尾動(dòng)脈放血時(shí)應使其尾部充分充血，否則難以使放血量達到要求量。眼眶采血達足量時(shí)，應迅速以消毒棉球壓迫眼球止血。

    (3)比較醫學(xué)  嚙齒類(lèi)動(dòng)物、兔、犬等常用實(shí)驗動(dòng)物均可復制失血性貧血模型，且造模方法均很簡(jiǎn)單、可靠。但采用不同動(dòng)物制作模型在操作方法及制作成本方面差異較大，應根據實(shí)驗目的來(lái)選擇模型動(dòng)物。